海水卵圓鞭毛蟲(海水絲絨病)Q&A - 水族
By Connor
at 2018-08-22T23:40
at 2018-08-22T23:40
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大家期待的小白點Q&A全集來了,
不過國內外學者對卵圓的研究沒有白點清楚,
對於治療也沒有很好的共識,
所以我也只能收集現有論文然後統整出這一篇文章。
但是關於卵圓鞭毛蟲的瞭解還是太少,
只能說大家自求多福啊!
海水卵圓鞭毛蟲的症狀
卵圓鞭毛蟲感染最討厭的地方就是
此蟲大多先感染鰓然後才感染體表,
所以當發現魚的體表有數不清的小白點時,
魚可能會在12小時內全數陣亡。
由於卵圓鞭毛蟲主要感染鰓部,
所以感染後表現出來的第一個症狀
通常會是呼吸急促與食慾下降。
因此養成觀察自己的魚的習慣很重要,
平常沒事就記錄一下自己的魚的呼吸頻率,
有助於卵圓鞭毛蟲的早期發現。
另外這裡必須要強調,
不是所有的魚在缺氧的時候都會浮頭,
有些魚的缺氧只會透過加速呼吸
或是靠近入水口與打氣石來表現,
症狀不是很明顯。
所以有時候魚突然暴斃就可能是卵圓造成。
而要如何確認是否為卵圓造成的暴斃呢?
將死去的魚鰓蓋剪開移除,
然後在鰓上面滴上稀釋後的碘液,
由於卵圓鞭毛蟲體內含有大量的澱粉,
所以蟲體會被染成黑色。
因此如果在魚鰓上看到大量的黑點出現,
就代表魚隻是因為感染卵圓鞭毛蟲而死。
這還必須要歸功於卵圓不像是白點一般現實。
海水白點在魚快死的時候就會離開魚體,
而海水卵圓則是在魚死後還會待在魚身上,
並且直接在原地變成tomont繼續他的生活史。
如果卵圓鞭毛蟲感染到體表,
則魚的體表會產生很多數不清的細碎白點,
很像糖霜或是鹽粒撒在魚的體表,
而魚則會有摩擦體表的現象。
海水白點蟲的大小可以到0.5mm左右,
卵圓鞭毛蟲最大不會超過0.08mm,
而人的肉眼最小只能分辨0.1mm,
所以我們可以很輕易地看到海水白點蟲造成的點,
但是卵圓鞭毛蟲的點看起來就有點若有似無。
也因此卵圓會讓魚的體表變得像是絲絨的質感,
所以這個疾病又稱為絲絨病。
而又因為他的白點會比海水白點的白點還要小很多,
所以又被稱為小白點。
至於金粉病與銹病則比較適合稱呼淡水卵圓。
因為海水的卵圓鞭毛蟲沒有葉綠體,
而淡水的卵圓鞭毛蟲有葉綠體,
所以淡水卵圓感染時看起來會有點綠綠黃黃的。
而也因為海水卵圓沒有葉綠體,
所以避光是否能增加海水卵圓的治癒率
就必須要打上一個問號了。
海水卵圓鞭毛蟲致死的原因
海水卵圓主要的致死原因是缺氧,
其次是滲透壓失衡與細菌的二次性感染。
卵圓鞭毛蟲的寄生狀態是透過假根穿刺入宿主的細胞,
吸收細胞內的養分為食,
一隻蟲體就可以造成很多宿主細胞的死亡。
因此當卵圓鞭毛蟲數量太多,
就會導致鰓細胞或體表細胞大量死亡,
使得魚隻無法獲得氧氣也無法維持身體的滲透壓平衡。
海水卵圓鞭毛蟲的生活史
https://imgur.com/czsymsL.jpg
海水卵圓的生活史與海水白點的非常像,
都是寄生時期的trophont會變成很難殺的tomont,
然後變成會游泳找宿主的時期
(卵圓鞭毛是dinospore,海水白點是theront)。
但是卵圓各個時期的抗性都比海水白點強太多,
以至於讓卵圓變得非常棘手。
卵圓的整個生活史只需要3~6天就能完成,
而海水白點則需要6~8天。
此外海水白點的tomont至少還會怕低鹽度與乾燥,
但是tomont沒有那麼怕。
卵圓真的只有dinospore可以用藥物殺滅,
但是卵圓的dinospore在環境中還可以存在6天左右,
而海水白點蟲的只能存活24小時。
這全部是因為卵圓鞭毛蟲其實是一種藻類,
他們的細胞最外層都有一層細胞壁,
細胞壁使得他們較能夠抵抗低鹽度與乾燥,
而且也讓藥物難以入侵,因此不論是下什麼藥,
對卵圓鞭毛蟲都無法立即見效,
所以當發現魚體身上充滿了小白點時
才對魚進行投藥,效果都會很差,
而且魚也幾乎救不回來。
卵圓鞭毛蟲感染的對象
卵圓和海水白點一樣都沒有很強的宿主特異性,
而且卵圓鞭毛蟲更不挑,
卵圓鞭毛蟲不只海水硬骨魚,
連軟骨魚都會被感染。
甚至連汽水域的魚類也會被感染。
最誇張的是還曾經有過感染魚的貝尼登吸蟲
被卵圓鞭毛蟲感染的案例(Colorni, 1994)。
雖然只有少數的報導,
但或許這也是為什麼有一些缸中
雖然空魚很久但是永遠清不掉卵圓的原因之一。
卵圓鞭毛蟲的傳播
卵圓鞭毛蟲的傳播方式和海水白點非常像,
也是可以透過魚體、海水還有活石軟體。
但是卵圓鞭毛蟲具有較強的抗乾燥的能力
所以他的傳播方式不只於此。
他還可以透過水霧傳播,
在沒有風的時候可以傳播50公分左右,
而在有風的時候則可以傳播三公尺之多
(Roberts-Thomson et al., 2006)。
所以檢疫缸和主缸一定要間隔一定的距離,
而治療缸和主缸也要離得夠遠,
最好在不同的房間內,
否則有可能會交叉汙染。
由於他們具有一定的抗乾燥能力,
所以也會透過網子、打氣管甚至是衣服進行傳播,
不像是白點蟲只要乾燥就會立即死亡。
所以處理完發病缸後,
除非換過衣服洗過手,
不然不要去碰健康的魚缸,
而使用完的器械也建議放乾兩到三天後
才能給其他魚缸使用。
此外卵圓鞭毛蟲的tomont具有抗凍能力,
所以餵食生餌或冷凍魚餌的魚,
也有可能透過這些餌料而被卵圓鞭毛蟲感染,
因此在水族箱裡餵食飼料還是比較好的做法。
治療卵圓鞭毛蟲的中心法則
三大原則:
使trophont脫落、
使tomont不分裂與殺死dinospore,
能夠囊括越多種阻斷的方法效果會越好。
Trophont在碰到淡水、25ppm福馬林、25ppm過氧化氫
或0.3ppm的銅離子時都會從魚體上脫落,
所以將魚從缸中移出,
然後處理這些物質5分鐘左右
可以大量減少魚身上的trophont數量,
減輕魚的症狀(Francis-Floyd and Floyd, 2011)。
Tomont在使用福馬林(25–200 ppm)、
孔雀綠(0.1–100 ppm) 和吖啶黃(0.1 -10 ppm)
處理後都不會死,
而且需要過幾天後tomont的分裂才會慢慢的被抑制
(Paperna, 1984)。
而銅離子就算濃度高達10ppm也不會對tomont產生影響。
所以要使tomont不分裂,
至少要讓水中的藥物成分維持濃度至少2~3個禮拜以上。
才有辦法抑制tomont的活化。
雖然dinospore可以被這些藥劑殺死,
但是並非100%的殺滅,而是大部分被殺滅,
所以也需要長期抗戰。
加溫的治療效果?
加溫本身單純只是加快蟲體的生命週期,
無法達到殺死蟲體的功能,
唯一可以用加溫殺死的常見寄生蟲只有淡水白點蟲。
因此加溫一定要搭配其他藥物使用。
但是一定要注意,加溫也會使魚的需氧量上升,
水中的溶氧量還會因為溫度上升而下降。
因此在魚本來就因為卵圓感染而呼吸急促的情況之下,
加溫只是加速魚的死亡。
加溫只建議用在魚隻狀況已經穩定,
而希望能夠完全清除缸中的卵圓鞭毛蟲的時候。
避光的治療效果?
有些人會說卵圓鞭毛蟲因為能行光合作用,
所以能夠在箱中維持數天沒有宿主而不死。
這在淡水卵圓鞭毛蟲是正確的,
但在海水卵圓鞭毛蟲是錯誤的。
因為海水卵圓鞭毛蟲沒有葉綠體,
所以感染海水卵圓的魚身上的點永遠都是小白點,
而不像淡水感染後會出現黃點。
所以在海水卵圓感染中,
避光這件事情不影響蟲體的存活。
但是避光可以讓魚比較不緊張,
所以對魚本身還是有點好處。
銅離子的治療效果?
海水卵圓對銅離子的抗性不可思議的高,
雖然dinospore可以被銅離子殺死,
但是要”完全”殺死dinospore的劑量(0.3~0.5ppm)
也和殺死某些魚的劑量差不多。
而tomont則是完全對銅離子的傷害免疫,
trophont雖然會因為銅離子而從魚身上脫落,
但是其活性卻完全不受影響。
因此在對銅敏感的魚類身上,
銅離子治療卵圓鞭毛蟲效果不會太好。
但如果飼養的魚隻可以耐受0.3ppm
甚至更高量的銅離子(最好可以超過0.5ppm),
則治療的效果也不會太差。
不過在檢疫的階段,
卵圓鞭毛蟲感染尚未大爆發時,
一般使用的銅離子濃度
就已經可以殺死大部分的dinospore,
剩下的就交給魚的免疫系統處理
畢竟可以跟卵圓鞭毛蟲共存又不發病的魚,
勢必已經被感染過一輪有抗性了。
因此檢疫的時候連續使用六個禮拜的硫酸銅,
可以去除卵圓鞭毛蟲的感染。
但是感染發生時使用銅離子緩不濟急。
另外順道一提,
銅離子對軟骨魚類十分的毒,
所以軟骨魚絕對不能使用銅離子治療。
低鹽度的治療效果?
大部分卵圓鞭毛蟲對鹽度的抗性
在千分之10到千分之44之間,
但是根據不同的蟲來源
有一些甚至可以適應千分之3的水域。
因此低鹽度對大部分的卵圓鞭毛蟲確實有用。
只要將缸內的鹽度以每天調降千分之5的方式,
慢慢的調降到千分之10左右,
不僅可以減少魚體內的水分流失,
減少離子大量的跑到魚體內,
還可以殺死dinospore,
所以降低鹽度2~3個禮拜具有一定的治療效果。
但是還是要看運氣,
如果剛好遇到可以抗低鹽度的蟲體,
這種治療方式對蟲就完全無效。
不過降低鹽度還是可以減少於滲透壓失衡的可能,
所以低鹽度對魚本身也是有幫助的。
至於有人會擔心海水魚是否會無法適應低鹽度?
事實上魚的體內滲透壓為千分之5到千分之8之間,
所以只要鹽度不要低於千分之8,
大部分的魚隻都可以適應。
但海水軟骨魚因為滲透壓和海水差異不大,
所以軟骨魚絕對不能使用低鹽度治療,
否則會死更快。
淡水的治療效果?
海水魚多半無法在淡水內待上太久,
因此淡水只能用於暫時浸泡,
使trophonts從身上脫落而已。
但如果飼養的為廣鹽性的魚類,
則將魚飼養在淡水中2~3個禮拜
可以完全的去除卵圓鞭毛蟲的感染。
AB缸的治療效果?
由於卵圓鞭毛蟲抗乾燥的能力比海水白點蟲強,
所以AB缸對卵圓鞭毛蟲只能降低蟲量,
但是無法完全殺滅,
除非可以確定有把缸中的每一個小角落刷洗乾淨,
沒有任何一片的生物膜殘留,
否則AB缸完全無法完全阻斷卵圓鞭毛蟲的感染。
加上AB缸會讓魚產生巨大的壓力。
與其用AB缸降低蟲量,
不如每天抽掉舊底砂,
然後補上新底砂,
連續個好幾天也能減少蟲量,
而且對魚的傷害也較小。
Chloroquine的治療效果?
Chloroquine只要10ppm每一個禮拜重覆給一次藥物,
就可以有效的去除卵圓鞭毛蟲的感染,
而且在給藥後隔天魚就恢復正常開始進食
(Ramesh Kumar et al., 2015)。
可以說是一種神藥。
不過有用過的人不是很多,
所以是否真的如論文說的那麼神也不是很清楚。
此外這個藥在台灣禁用所以買不到,
在人類用藥中則因為副作用太大已經被取代,
所以也買不太到。
而取代chloroquine的藥物hydroxychloroquine
據國外玩家的嘗試對卵圓沒有效果,
因此無法使用。
另外要提醒的是chloroquine也會殺珊瑚,
所以軟體缸不能用。
孔雀綠、福馬林、吖啶黃的治療效果?
這三種藥物都可以抑制tomont的複製,
因此確實可以治療卵圓的感染。
但是這三種藥物的作用都需要數天才能開始,
而不是加藥下去蟲體的複製馬上停止。
因此對於急性感染魚隻的急救上效果不太好,
但對於後續要清除卵圓鞭毛蟲倒是具有一定的效果。
只是這三者的藥物濃度維持不像是銅離子一樣好監測,
所以使用上會有一定的困難。
目前論文中治療效果最好的組合
2018年有一篇論文比較了使用低鹽度、
銅離子與低鹽度+銅離子的組合
治療卵圓鞭毛蟲的研究。
低鹽度的組別是使用鹽度千分之10的海水進行飼養。
銅離子的組別則是每天將魚浸泡在
0.3ppm銅離子濃度的海水中2個小時後換乾淨的水。
低鹽度+銅離子的組別則是在將鹽度降到千分之10後,
每天用0.1ppm的銅離子浸泡魚隻四個小時後換水。
處理14天後
發現單獨使用銅離子或單獨用低鹽度治療的組別,
雖然死亡率都比沒有處理的組別低,
但是身上還是有卵圓鞭毛蟲存在。
而並用低鹽度和銅離子的組別魚隻死亡率大幅下降,
且魚隻身上也檢測不出蟲體。
代表低鹽度+銅離子可以加速蟲體從系統中清除。
這個實驗中證明了在低鹽度下
只要使用低濃度的銅離子就能有效的殺滅卵圓鞭毛蟲。
但是這個方式是否可以用在耐低鹽的卵圓鞭毛蟲
就還需要更多的實驗下去證明,
此外這個方式也就只有這麼一篇論文報導,
所以是否可能用還需要更多人下去做實驗才能證明
(Bessat and Fadel, 2018)。
卵圓鞭毛蟲的治療搭配
基於讓魚舒服、能涵蓋最多阻斷蟲體生活
史以及大家好操作的原則。
我還是推薦使用低鹽度+浸泡2~4小時0.1ppm的銅離子
+抽底砂三種方式共同操作。
低鹽度主要是為了讓魚不用面臨那麼大的滲透壓壓力,
使魚隻可以減少體力消耗,
也以防魚隻死於滲透壓不平衡,
如果蟲體不耐低鹽則也可以順便殺dinospore。
每天抓出來浸泡數個小時的銅離子
則是為了讓魚體上的寄生蟲脫落,
減少在缸中變成tomont的蟲體數量。
而定期抽底砂則可以直接減少缸中的tomont數量。
這個方法最大的壞處就是低鹽度會讓KH一起低,
所以水質的波動會很大,
而且如果蟲體可以耐低鹽,
則這個方法的殺滅效果就會比較差。
如果魚對銅離子的耐受性高,
在缸中可以使用超過0.5ppm的銅離子時,
則可以使用銅離子長期浸泡
+5分鐘的淡水浴or 福馬林浴or 雙氧水浴
+抽底砂三個共同操作。
銅離子的長期浸泡可以殺死dinospore,
而每天魚出來進行藥浴則可以讓寄生蟲從魚體身上脫落,
抽底砂也是直接減少tomont數量。
如果想用孔雀綠、福馬林、吖啶黃取代銅離子也可以,
但是必須要克服濃度無法監控的問題,
如果藥物濃度無法維持,則治療就會失敗。
這個方法的最大問題就是遇到對銅敏感的魚就不能用。
卵圓鞭毛蟲的防疫
防止卵圓入侵系統的方式和防止白點入侵差不多。
都是把新進魚放到檢疫缸裡面,
然後連續下銅藥6個禮拜左右。
停藥後因為銅離子的關係魚的免疫會暫時變差,
這時後如果疾病沒有爆發就是沒事。
如果疾病有爆發就可以看得出來了。
等到銅藥停了以後觀察2~3個禮拜如果都沒事,
魚就可以放到主缸裡了。
卵圓的dinospore因為可以在海水中存活6天,
所以海水至少要靜置一個禮拜以上才能防止卵圓汙染,
或是用1um的網袋過濾海水也可以防止dinospore汙染,
因為dinospore的大小約10~15 um X 20~25um。
活石和軟體必須要在沒有魚的缸內
放置超過11個禮拜再加入主缸會比較好,
不過不像是海水白點蟲,
在卵圓沒有人研究他的tomont可以存在環境中多久,
所11個禮拜到底夠不夠預防卵圓感染不是很清楚,
而為什麼是11個禮拜,
則是因為海水白點蟲的tomont最多可以存活72天。
由於卵圓可以透過冷凍的餌料還有生餌傳播,
所以餵食魚隻最好使用飼料不要用生餌。
每個水族缸之間的器械盡量分開使用,
不要共用器械。
而染病缸的器具使用完後可以選擇
以淡水浸泡數天後乾燥,
或是直接乾燥一個禮拜後再使用。
由於卵圓鞭毛蟲會透過空氣中的水霧傳播,
所以檢疫缸和主缸最好在不同的房間,
如果在同一個房間則水缸上必須要加蓋。
參考資料
1. Bessat, M., Fadel, A., 2018. Amyloodiniosis in cultured Dicentrarchus
labrax: parasitological and molecular diagnosis, and an improved treatment
protocol. Diseases of aquatic organisms 129, 41-51.
2. Colorni, A., 1994. Hyperparasitism of Amyloodinium ocellatum
(Dinoflagellida: Oodinidae) on Neobenedenia melleri (Monogenea: Capsalidae).
Diseases of aquatic organisms 19, 157-157.
3. Francis-Floyd, R., Floyd, M.R., 2011. Amyloodinium ocellatum, an important
parasite of cultured marine fish. Southern Regional Aquaculture Center.
4. Paperna, I., 1984. Chemical control of Amyloodinium ocellatum (Brown
1931)(Dinoflagellida) infections: in vitro tests and treatment trials with
infected fishes. Aquaculture 38, 1-18.
5. Ramesh Kumar, P., Nazar, A.A., Jayakumar, R., Tamilmani, G., Sakthivel,
M., Kalidas, C., Balamurugan, V., Sirajudeen, S., Thiagu, R., Gopakumar, G.,
2015. Amyloodinium ocellatum infestation in the broodstock of silver pompano
Trachinotus blochii (Lacepede, 1801) and its therapeutic control. Indian
Journal of Fisheries 62, 131-134.
6. Roberts-Thomson, A., Barnes, A., Fielder, D.S., Lester, R.J., Adlard,
R.D., 2006. Aerosol dispersal of the fish pathogen, Amyloodinium ocellatum.
Aquaculture 257, 118-123.
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不過國內外學者對卵圓的研究沒有白點清楚,
對於治療也沒有很好的共識,
所以我也只能收集現有論文然後統整出這一篇文章。
但是關於卵圓鞭毛蟲的瞭解還是太少,
只能說大家自求多福啊!
海水卵圓鞭毛蟲的症狀
卵圓鞭毛蟲感染最討厭的地方就是
此蟲大多先感染鰓然後才感染體表,
所以當發現魚的體表有數不清的小白點時,
魚可能會在12小時內全數陣亡。
由於卵圓鞭毛蟲主要感染鰓部,
所以感染後表現出來的第一個症狀
通常會是呼吸急促與食慾下降。
因此養成觀察自己的魚的習慣很重要,
平常沒事就記錄一下自己的魚的呼吸頻率,
有助於卵圓鞭毛蟲的早期發現。
另外這裡必須要強調,
不是所有的魚在缺氧的時候都會浮頭,
有些魚的缺氧只會透過加速呼吸
或是靠近入水口與打氣石來表現,
症狀不是很明顯。
所以有時候魚突然暴斃就可能是卵圓造成。
而要如何確認是否為卵圓造成的暴斃呢?
將死去的魚鰓蓋剪開移除,
然後在鰓上面滴上稀釋後的碘液,
由於卵圓鞭毛蟲體內含有大量的澱粉,
所以蟲體會被染成黑色。
因此如果在魚鰓上看到大量的黑點出現,
就代表魚隻是因為感染卵圓鞭毛蟲而死。
這還必須要歸功於卵圓不像是白點一般現實。
海水白點在魚快死的時候就會離開魚體,
而海水卵圓則是在魚死後還會待在魚身上,
並且直接在原地變成tomont繼續他的生活史。
如果卵圓鞭毛蟲感染到體表,
則魚的體表會產生很多數不清的細碎白點,
很像糖霜或是鹽粒撒在魚的體表,
而魚則會有摩擦體表的現象。
海水白點蟲的大小可以到0.5mm左右,
卵圓鞭毛蟲最大不會超過0.08mm,
而人的肉眼最小只能分辨0.1mm,
所以我們可以很輕易地看到海水白點蟲造成的點,
但是卵圓鞭毛蟲的點看起來就有點若有似無。
也因此卵圓會讓魚的體表變得像是絲絨的質感,
所以這個疾病又稱為絲絨病。
而又因為他的白點會比海水白點的白點還要小很多,
所以又被稱為小白點。
至於金粉病與銹病則比較適合稱呼淡水卵圓。
因為海水的卵圓鞭毛蟲沒有葉綠體,
而淡水的卵圓鞭毛蟲有葉綠體,
所以淡水卵圓感染時看起來會有點綠綠黃黃的。
而也因為海水卵圓沒有葉綠體,
所以避光是否能增加海水卵圓的治癒率
就必須要打上一個問號了。
海水卵圓鞭毛蟲致死的原因
海水卵圓主要的致死原因是缺氧,
其次是滲透壓失衡與細菌的二次性感染。
卵圓鞭毛蟲的寄生狀態是透過假根穿刺入宿主的細胞,
吸收細胞內的養分為食,
一隻蟲體就可以造成很多宿主細胞的死亡。
因此當卵圓鞭毛蟲數量太多,
就會導致鰓細胞或體表細胞大量死亡,
使得魚隻無法獲得氧氣也無法維持身體的滲透壓平衡。
海水卵圓鞭毛蟲的生活史
https://imgur.com/czsymsL.jpg
海水卵圓的生活史與海水白點的非常像,
都是寄生時期的trophont會變成很難殺的tomont,
然後變成會游泳找宿主的時期
(卵圓鞭毛是dinospore,海水白點是theront)。
但是卵圓各個時期的抗性都比海水白點強太多,
以至於讓卵圓變得非常棘手。
卵圓的整個生活史只需要3~6天就能完成,
而海水白點則需要6~8天。
此外海水白點的tomont至少還會怕低鹽度與乾燥,
但是tomont沒有那麼怕。
卵圓真的只有dinospore可以用藥物殺滅,
但是卵圓的dinospore在環境中還可以存在6天左右,
而海水白點蟲的只能存活24小時。
這全部是因為卵圓鞭毛蟲其實是一種藻類,
他們的細胞最外層都有一層細胞壁,
細胞壁使得他們較能夠抵抗低鹽度與乾燥,
而且也讓藥物難以入侵,因此不論是下什麼藥,
對卵圓鞭毛蟲都無法立即見效,
所以當發現魚體身上充滿了小白點時
才對魚進行投藥,效果都會很差,
而且魚也幾乎救不回來。
卵圓鞭毛蟲感染的對象
卵圓和海水白點一樣都沒有很強的宿主特異性,
而且卵圓鞭毛蟲更不挑,
卵圓鞭毛蟲不只海水硬骨魚,
連軟骨魚都會被感染。
甚至連汽水域的魚類也會被感染。
最誇張的是還曾經有過感染魚的貝尼登吸蟲
被卵圓鞭毛蟲感染的案例(Colorni, 1994)。
雖然只有少數的報導,
但或許這也是為什麼有一些缸中
雖然空魚很久但是永遠清不掉卵圓的原因之一。
卵圓鞭毛蟲的傳播
卵圓鞭毛蟲的傳播方式和海水白點非常像,
也是可以透過魚體、海水還有活石軟體。
但是卵圓鞭毛蟲具有較強的抗乾燥的能力
所以他的傳播方式不只於此。
他還可以透過水霧傳播,
在沒有風的時候可以傳播50公分左右,
而在有風的時候則可以傳播三公尺之多
(Roberts-Thomson et al., 2006)。
所以檢疫缸和主缸一定要間隔一定的距離,
而治療缸和主缸也要離得夠遠,
最好在不同的房間內,
否則有可能會交叉汙染。
由於他們具有一定的抗乾燥能力,
所以也會透過網子、打氣管甚至是衣服進行傳播,
不像是白點蟲只要乾燥就會立即死亡。
所以處理完發病缸後,
除非換過衣服洗過手,
不然不要去碰健康的魚缸,
而使用完的器械也建議放乾兩到三天後
才能給其他魚缸使用。
此外卵圓鞭毛蟲的tomont具有抗凍能力,
所以餵食生餌或冷凍魚餌的魚,
也有可能透過這些餌料而被卵圓鞭毛蟲感染,
因此在水族箱裡餵食飼料還是比較好的做法。
治療卵圓鞭毛蟲的中心法則
三大原則:
使trophont脫落、
使tomont不分裂與殺死dinospore,
能夠囊括越多種阻斷的方法效果會越好。
Trophont在碰到淡水、25ppm福馬林、25ppm過氧化氫
或0.3ppm的銅離子時都會從魚體上脫落,
所以將魚從缸中移出,
然後處理這些物質5分鐘左右
可以大量減少魚身上的trophont數量,
減輕魚的症狀(Francis-Floyd and Floyd, 2011)。
Tomont在使用福馬林(25–200 ppm)、
孔雀綠(0.1–100 ppm) 和吖啶黃(0.1 -10 ppm)
處理後都不會死,
而且需要過幾天後tomont的分裂才會慢慢的被抑制
(Paperna, 1984)。
而銅離子就算濃度高達10ppm也不會對tomont產生影響。
所以要使tomont不分裂,
至少要讓水中的藥物成分維持濃度至少2~3個禮拜以上。
才有辦法抑制tomont的活化。
雖然dinospore可以被這些藥劑殺死,
但是並非100%的殺滅,而是大部分被殺滅,
所以也需要長期抗戰。
加溫的治療效果?
加溫本身單純只是加快蟲體的生命週期,
無法達到殺死蟲體的功能,
唯一可以用加溫殺死的常見寄生蟲只有淡水白點蟲。
因此加溫一定要搭配其他藥物使用。
但是一定要注意,加溫也會使魚的需氧量上升,
水中的溶氧量還會因為溫度上升而下降。
因此在魚本來就因為卵圓感染而呼吸急促的情況之下,
加溫只是加速魚的死亡。
加溫只建議用在魚隻狀況已經穩定,
而希望能夠完全清除缸中的卵圓鞭毛蟲的時候。
避光的治療效果?
有些人會說卵圓鞭毛蟲因為能行光合作用,
所以能夠在箱中維持數天沒有宿主而不死。
這在淡水卵圓鞭毛蟲是正確的,
但在海水卵圓鞭毛蟲是錯誤的。
因為海水卵圓鞭毛蟲沒有葉綠體,
所以感染海水卵圓的魚身上的點永遠都是小白點,
而不像淡水感染後會出現黃點。
所以在海水卵圓感染中,
避光這件事情不影響蟲體的存活。
但是避光可以讓魚比較不緊張,
所以對魚本身還是有點好處。
銅離子的治療效果?
海水卵圓對銅離子的抗性不可思議的高,
雖然dinospore可以被銅離子殺死,
但是要”完全”殺死dinospore的劑量(0.3~0.5ppm)
也和殺死某些魚的劑量差不多。
而tomont則是完全對銅離子的傷害免疫,
trophont雖然會因為銅離子而從魚身上脫落,
但是其活性卻完全不受影響。
因此在對銅敏感的魚類身上,
銅離子治療卵圓鞭毛蟲效果不會太好。
但如果飼養的魚隻可以耐受0.3ppm
甚至更高量的銅離子(最好可以超過0.5ppm),
則治療的效果也不會太差。
不過在檢疫的階段,
卵圓鞭毛蟲感染尚未大爆發時,
一般使用的銅離子濃度
就已經可以殺死大部分的dinospore,
剩下的就交給魚的免疫系統處理
畢竟可以跟卵圓鞭毛蟲共存又不發病的魚,
勢必已經被感染過一輪有抗性了。
因此檢疫的時候連續使用六個禮拜的硫酸銅,
可以去除卵圓鞭毛蟲的感染。
但是感染發生時使用銅離子緩不濟急。
另外順道一提,
銅離子對軟骨魚類十分的毒,
所以軟骨魚絕對不能使用銅離子治療。
低鹽度的治療效果?
大部分卵圓鞭毛蟲對鹽度的抗性
在千分之10到千分之44之間,
但是根據不同的蟲來源
有一些甚至可以適應千分之3的水域。
因此低鹽度對大部分的卵圓鞭毛蟲確實有用。
只要將缸內的鹽度以每天調降千分之5的方式,
慢慢的調降到千分之10左右,
不僅可以減少魚體內的水分流失,
減少離子大量的跑到魚體內,
還可以殺死dinospore,
所以降低鹽度2~3個禮拜具有一定的治療效果。
但是還是要看運氣,
如果剛好遇到可以抗低鹽度的蟲體,
這種治療方式對蟲就完全無效。
不過降低鹽度還是可以減少於滲透壓失衡的可能,
所以低鹽度對魚本身也是有幫助的。
至於有人會擔心海水魚是否會無法適應低鹽度?
事實上魚的體內滲透壓為千分之5到千分之8之間,
所以只要鹽度不要低於千分之8,
大部分的魚隻都可以適應。
但海水軟骨魚因為滲透壓和海水差異不大,
所以軟骨魚絕對不能使用低鹽度治療,
否則會死更快。
淡水的治療效果?
海水魚多半無法在淡水內待上太久,
因此淡水只能用於暫時浸泡,
使trophonts從身上脫落而已。
但如果飼養的為廣鹽性的魚類,
則將魚飼養在淡水中2~3個禮拜
可以完全的去除卵圓鞭毛蟲的感染。
AB缸的治療效果?
由於卵圓鞭毛蟲抗乾燥的能力比海水白點蟲強,
所以AB缸對卵圓鞭毛蟲只能降低蟲量,
但是無法完全殺滅,
除非可以確定有把缸中的每一個小角落刷洗乾淨,
沒有任何一片的生物膜殘留,
否則AB缸完全無法完全阻斷卵圓鞭毛蟲的感染。
加上AB缸會讓魚產生巨大的壓力。
與其用AB缸降低蟲量,
不如每天抽掉舊底砂,
然後補上新底砂,
連續個好幾天也能減少蟲量,
而且對魚的傷害也較小。
Chloroquine的治療效果?
Chloroquine只要10ppm每一個禮拜重覆給一次藥物,
就可以有效的去除卵圓鞭毛蟲的感染,
而且在給藥後隔天魚就恢復正常開始進食
(Ramesh Kumar et al., 2015)。
可以說是一種神藥。
不過有用過的人不是很多,
所以是否真的如論文說的那麼神也不是很清楚。
此外這個藥在台灣禁用所以買不到,
在人類用藥中則因為副作用太大已經被取代,
所以也買不太到。
而取代chloroquine的藥物hydroxychloroquine
據國外玩家的嘗試對卵圓沒有效果,
因此無法使用。
另外要提醒的是chloroquine也會殺珊瑚,
所以軟體缸不能用。
孔雀綠、福馬林、吖啶黃的治療效果?
這三種藥物都可以抑制tomont的複製,
因此確實可以治療卵圓的感染。
但是這三種藥物的作用都需要數天才能開始,
而不是加藥下去蟲體的複製馬上停止。
因此對於急性感染魚隻的急救上效果不太好,
但對於後續要清除卵圓鞭毛蟲倒是具有一定的效果。
只是這三者的藥物濃度維持不像是銅離子一樣好監測,
所以使用上會有一定的困難。
目前論文中治療效果最好的組合
2018年有一篇論文比較了使用低鹽度、
銅離子與低鹽度+銅離子的組合
治療卵圓鞭毛蟲的研究。
低鹽度的組別是使用鹽度千分之10的海水進行飼養。
銅離子的組別則是每天將魚浸泡在
0.3ppm銅離子濃度的海水中2個小時後換乾淨的水。
低鹽度+銅離子的組別則是在將鹽度降到千分之10後,
每天用0.1ppm的銅離子浸泡魚隻四個小時後換水。
處理14天後
發現單獨使用銅離子或單獨用低鹽度治療的組別,
雖然死亡率都比沒有處理的組別低,
但是身上還是有卵圓鞭毛蟲存在。
而並用低鹽度和銅離子的組別魚隻死亡率大幅下降,
且魚隻身上也檢測不出蟲體。
代表低鹽度+銅離子可以加速蟲體從系統中清除。
這個實驗中證明了在低鹽度下
只要使用低濃度的銅離子就能有效的殺滅卵圓鞭毛蟲。
但是這個方式是否可以用在耐低鹽的卵圓鞭毛蟲
就還需要更多的實驗下去證明,
此外這個方式也就只有這麼一篇論文報導,
所以是否可能用還需要更多人下去做實驗才能證明
(Bessat and Fadel, 2018)。
卵圓鞭毛蟲的治療搭配
基於讓魚舒服、能涵蓋最多阻斷蟲體生活
史以及大家好操作的原則。
我還是推薦使用低鹽度+浸泡2~4小時0.1ppm的銅離子
+抽底砂三種方式共同操作。
低鹽度主要是為了讓魚不用面臨那麼大的滲透壓壓力,
使魚隻可以減少體力消耗,
也以防魚隻死於滲透壓不平衡,
如果蟲體不耐低鹽則也可以順便殺dinospore。
每天抓出來浸泡數個小時的銅離子
則是為了讓魚體上的寄生蟲脫落,
減少在缸中變成tomont的蟲體數量。
而定期抽底砂則可以直接減少缸中的tomont數量。
這個方法最大的壞處就是低鹽度會讓KH一起低,
所以水質的波動會很大,
而且如果蟲體可以耐低鹽,
則這個方法的殺滅效果就會比較差。
如果魚對銅離子的耐受性高,
在缸中可以使用超過0.5ppm的銅離子時,
則可以使用銅離子長期浸泡
+5分鐘的淡水浴or 福馬林浴or 雙氧水浴
+抽底砂三個共同操作。
銅離子的長期浸泡可以殺死dinospore,
而每天魚出來進行藥浴則可以讓寄生蟲從魚體身上脫落,
抽底砂也是直接減少tomont數量。
如果想用孔雀綠、福馬林、吖啶黃取代銅離子也可以,
但是必須要克服濃度無法監控的問題,
如果藥物濃度無法維持,則治療就會失敗。
這個方法的最大問題就是遇到對銅敏感的魚就不能用。
卵圓鞭毛蟲的防疫
防止卵圓入侵系統的方式和防止白點入侵差不多。
都是把新進魚放到檢疫缸裡面,
然後連續下銅藥6個禮拜左右。
停藥後因為銅離子的關係魚的免疫會暫時變差,
這時後如果疾病沒有爆發就是沒事。
如果疾病有爆發就可以看得出來了。
等到銅藥停了以後觀察2~3個禮拜如果都沒事,
魚就可以放到主缸裡了。
卵圓的dinospore因為可以在海水中存活6天,
所以海水至少要靜置一個禮拜以上才能防止卵圓汙染,
或是用1um的網袋過濾海水也可以防止dinospore汙染,
因為dinospore的大小約10~15 um X 20~25um。
活石和軟體必須要在沒有魚的缸內
放置超過11個禮拜再加入主缸會比較好,
不過不像是海水白點蟲,
在卵圓沒有人研究他的tomont可以存在環境中多久,
所11個禮拜到底夠不夠預防卵圓感染不是很清楚,
而為什麼是11個禮拜,
則是因為海水白點蟲的tomont最多可以存活72天。
由於卵圓可以透過冷凍的餌料還有生餌傳播,
所以餵食魚隻最好使用飼料不要用生餌。
每個水族缸之間的器械盡量分開使用,
不要共用器械。
而染病缸的器具使用完後可以選擇
以淡水浸泡數天後乾燥,
或是直接乾燥一個禮拜後再使用。
由於卵圓鞭毛蟲會透過空氣中的水霧傳播,
所以檢疫缸和主缸最好在不同的房間,
如果在同一個房間則水缸上必須要加蓋。
參考資料
1. Bessat, M., Fadel, A., 2018. Amyloodiniosis in cultured Dicentrarchus
labrax: parasitological and molecular diagnosis, and an improved treatment
protocol. Diseases of aquatic organisms 129, 41-51.
2. Colorni, A., 1994. Hyperparasitism of Amyloodinium ocellatum
(Dinoflagellida: Oodinidae) on Neobenedenia melleri (Monogenea: Capsalidae).
Diseases of aquatic organisms 19, 157-157.
3. Francis-Floyd, R., Floyd, M.R., 2011. Amyloodinium ocellatum, an important
parasite of cultured marine fish. Southern Regional Aquaculture Center.
4. Paperna, I., 1984. Chemical control of Amyloodinium ocellatum (Brown
1931)(Dinoflagellida) infections: in vitro tests and treatment trials with
infected fishes. Aquaculture 38, 1-18.
5. Ramesh Kumar, P., Nazar, A.A., Jayakumar, R., Tamilmani, G., Sakthivel,
M., Kalidas, C., Balamurugan, V., Sirajudeen, S., Thiagu, R., Gopakumar, G.,
2015. Amyloodinium ocellatum infestation in the broodstock of silver pompano
Trachinotus blochii (Lacepede, 1801) and its therapeutic control. Indian
Journal of Fisheries 62, 131-134.
6. Roberts-Thomson, A., Barnes, A., Fielder, D.S., Lester, R.J., Adlard,
R.D., 2006. Aerosol dispersal of the fish pathogen, Amyloodinium ocellatum.
Aquaculture 257, 118-123.
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